表面等離子共振儀SPRm 200 系列
2017年R&D100獲獎設備 
表面等離子體共振(SPR)是一種廣泛用于研究生物分子結合的免標記檢測技術。 從90 年代商品化以來，SPR 在儀器的發展和應用層面上已日臻完善，并成為在生物、傳感器研發、開發等領域的關鍵技術之一。近年來與SPR 相關的重大的就是表面等離子體共振顯微鏡技術（SPRM）的出現。
SPRM 將高分辨顯微鏡成像與表面等離子體共振相結合，充分利用了前者的空間成像和后者實時測量親和力和動力學的功能。用傳統的SPR 研究膜蛋白和待篩選的和其他配體的相互作用是有難度的，這是因為傳統方法需要繁瑣地提取細胞中的蛋白，并將純化過的蛋白固定在芯片表面。 這樣多步的程序不但耗費人力，而且改變了蛋白在細胞膜中所處的環境。SPRM 由于可以直接在芯片上固定或培養細胞，因此可以無需提取細胞中的蛋白，就可在原位研究其結合過程。另外，每一細胞上膜蛋白局部和整體的結合都可以測定和觀察到。
SPRM 模式 (高分辨顯微技術) 集成光學顯微鏡與SPR技術
SPRM 是一種基于高分辨成像技術的SPR 檢測模式。它同時對芯片表面提供明場光學圖像和親和力和動力學常數。獲得的圖像中的每個像素都可提供一個傳感譜圖，因此可以對芯片表面的各個微小區域的分子結合情況予以空間上的示蹤，從而提供遠多于傳統SPR 的信息。換言之，SPRM 不但以提供傳統SPR 獲取的信息，還可以對諸如細胞表面與分子作用的異相性進行研究。正是其的高分辨率使得傳統SPR 不能直接檢測的細菌或結合過程成為可能。SPRM 有利于檢測分子與處于活細胞中天然態的膜蛋白的相互作用。
SPRm200是世界上臺將表面等離子體共振技術和光學顯微鏡巧妙結合為一體的生物傳感檢測儀。它為免標記研究分子相互作用的領域開辟一個嶄新的前沿。專門針對細胞膜蛋白和相關分子免標記檢測而設計的SPRm200， 使您在不需要從細胞中提取和分離膜蛋白的前提下實時觀察細胞結構并同時測量和靶點在細胞上的結合過程。還可進行對和在天然狀態下的膜蛋白之間相互作用的測量。由于出色的靈敏度和穩定性，SPRm200能夠測量納米尺度上的結合行為，可用于研究細菌或與菌性的相互作用，以及發展新型載遞納米顆粒。 
? 活細胞上免標記生物分子結合過程的檢測
? 實時結合力及動力學定量測量像圖
? 光學和表面等離子體共振同時成像
? 分子對多細胞或單細胞作用的檢測? 納米尺度上分子結合過程的跟蹤檢測
SPRm 200 系統主要參數一覽表
| 基礎配置 | 光源 | 690 nm |
| 入射角 | 40-76 Deg (連續) | |
| 基線噪聲 | < 0.6 RU RMS (0.1 mDeg RMS) | |
| 基線漂移 | 3 RU/hr (0.5 mDeg/hr) （當周圍環境漂移< 1°C/hr) | |
| 溫度控制范圍 | 15°C to 40°C （降溫限止在低于室溫10°C) | |
| 視場 | Bright Field: 1200 x 900 um SPR: 600 x 450 um | |
| 放大倍數 | Bright Field: x10 SPR: x20 | |
| 分辨率 | Bright Field & SPR: 1 μm | |
| 平臺的平移和旋轉（范圍） | 3mm x 3mm / 360 deg | |
| 外形尺寸 | 690 (w) x 330 (h) x 340 (d) mm | |
| 重量 | 23 kg | |
| 電源 | 110-230 V 50/60 Hz | |
| 流體處理 | 樣品體積 | 1 to 1500 μL (application dependent) |
| 動力學常量 | k a <1 X 107 M-1 s-1k d >1 X 10-5 s-1 | |
| 離解常量 | KD = 10-3 M (1 mM) to 10-12 M (1 pM) | |
| 分子量篩截 | 200 Da | |
| 控制體系 | 電腦 | 微軟Windows操作系統 |
| 軟件 | ImageSPRTM 軟件，包括數據分析和動力學分析包 | |
| 自動進樣器（可選） | 試樣容量 | 2 x S standards (384/96)2 x 48 Vials (1.5ml)2 x 12 Vials (10ml) |
| 體積 | 0ml to 9999ml | |
| 樣品冷卻 | Minimum: 4℃+/-2℃ | |
| 外圍尺寸 | 300(W) x 575 (h) x 360 (d) mm |
典型應用：
相比傳統的SPR技術只能在整體傳感區域內（通常稱之為通道）測量平均共振角度的變化，SPRm200探測器能夠測量局部像素點上的共振角度變化并且記錄每一個像素點上的傳感曲線圖。如圖2 就顯示了SPRm200同時記錄的明視場圖和SPR像圖以及圖中任何一點或區域的傳感曲線圖。因此它能提供更多的局部信息，并且可以在自然狀態下研究膜蛋白的非均相表面結合以及它們和之間的相互作用。 
SPRM 圖像 – 同時的明場圖像(A) 和SPR 圖像(B).各部位的結合親和力和動力學數據可從傳感譜圖(C)中算出。
凝集素 - 糖蛋白相互作用
基本的細胞和治療過程通常開始于配體與膜蛋白的結合，并且膜蛋白在其天然狀態中的結合研究對于理解它們的生物學功能。這里是研究糖蛋白（膜蛋白）和凝集素（配體）之間的特異性相互作用以及單個細胞膜上的受體的結合和空間分布的實例。 
經瘤細胞SHEP1在芯片上的細胞室中被孵化，然后置于SPRM樣品臺上。 將PBS緩沖液在25℃以300ul/min的流速加入細胞室。將凝集 素，80ug/ml的小麥胚芽凝集素（WGA），注入細胞室，然后用PBS緩沖液沖洗。用不同的WGA濃度（5, 10, 40, 80, 100, 200ug/ml）重復對細胞的類似測量。使用50mM GlcNAc 溶液來再生細胞表面上 的膜糖蛋白受體。用不同的WGA濃度（5, 10, 40, 80,100, 200 μg/ml）重復對細胞的進行類似測量，則可以得到如右圖所示的一系列傳感曲線圖。將每個像素的數據予以平均后，可以使用結合動力學模型（參見下文）推導出細胞不同部位上的結合動力學參數。我們儀器測量結果與以前發表的數據十分吻合[4]。
nACHRs 的結合行為的定位
nAChR膜受體在經傳遞和成癮中起著關鍵作用，通常測定受體在細胞中的分布使用熒光標記的二。由于熒光檢測不能提供直接的動力學數據而容易導致假陽性的結論，SPRm200因為直接測量一與二的nAChR的結合，該過程不更加簡單，且克服了被標記的二所引起的不確定因素。 
上圖中，工程化SH-EP1細胞在膜上表達α4β2 受體，并結合初代體α4（右圖）。通過SPR 像圖所顯示的nAChR 同其初代體結合的分布（粉紅色），可以明顯看出這是一個非均相的表面結合。用SH-EP1野生型細胞來作為對照， 傳感曲線右下圖A顯示了兩種類型的細胞對nAChR的反應具有顯著差異。如傳感圖B中所示，從SH-EP1工程化細胞反應減去野生型細胞反應（主要出于體積折射率效應）可以得到nAChR與其體的結合動力學，它們分別為kon = 6×104/Ms，koff = 3×10-3/s 和KD=45nM。
納米顆粒檢測
SPR光源按共振角度投射到傳感器芯片上使其產生一個沿著金屬膜表面傳播的表面等離子體(SP)波，如圖3所示。當一個納米顆粒結合到芯片表面時，它便成為SP波的散射點，因而會在SPR像中產生波紋圖案。其形狀遠遠大于納米顆粒的實際尺寸（100 ）。這放大的波紋圖案使得SPRm200能夠檢測到粒子尺度遠小于其光學衍射的限，通過對這個放大的波紋圖案進行跟蹤和測量，就能實現對分子在納米尺度下的結合行為進行監測和研究。 
在納米尺度上，由一個納米顆粒所產生的SPR響應信號。就好像把一個小石子放在一個緩緩流動的淺溪中，水面上就會產生一個波紋圖案（參考左圖）。 在SPR像中，這些波紋的產生以及其強度的變化為納米顆粒和芯片表面或和溶液中其它分子的相互作用提供了豐富的信息[1，5]。
細菌和生素
活的大腸桿菌O157:H7 在LB肉湯培養基中通過體偶聯被系在傳感器芯片上。他們因散射芯片中的SP波而在SPR像上產生許多點波紋如下圖右邊所示。
雖然明視場的細菌細胞像（小黑點）穩定，SPR像中的點波紋強度有著顯著的變化。通過監測這些波紋在納米尺度下的強度波動，可為我們提供細菌細胞的的重要信息。當將500μg/mL的性生素多粘菌素B（P）加入細胞室時，細菌細胞的波動急劇減弱（下右圖），從而表征細菌的亡。 
